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單細胞ATAC-seq

細胞染色質(zhì)開放區(qū)域檢測新技術

產(chǎn)品介紹

單細胞ATAC測序(scATAC-seq)是基于10x genomics平臺的微流控和油滴包裹技術,在單細胞水平對細胞染色質(zhì)開放區(qū)域進行檢測的新技術,可用于繪制細胞染色質(zhì)開放區(qū)的單細胞圖譜,是一種高分辨率研究染色質(zhì)開放程度與DNA結合蛋白調(diào)控基因的表達網(wǎng)絡,在單細胞水平研究表觀遺傳學的有效手段。

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染色質(zhì)可及性檢測-ATAC測序技術
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染色質(zhì)可及性檢測-ATAC測序技術

染色質(zhì)可及性的早期研究技術是ATAC-seq(Assay for transposase-accessible chromatin with high-throughput sequencing),該技術可進行高通量測序的染色質(zhì)可及性(開放性)研究,而染色質(zhì)開放區(qū)域一般是染色質(zhì)中呈松散狀態(tài)、可發(fā)生DNA復制和基因轉錄的區(qū)域,ATAC-seq 使用改造 Tn5轉座酶,捕獲染色質(zhì)開放區(qū),將測序接頭引入開放染色質(zhì)的兩端,用于表觀遺傳、基因調(diào)控研究。2015 年 Science 和Nature發(fā)表論文先后提出利用單細胞 ATAC-seq 技術對染色質(zhì)可及性進行檢測,探索細胞轉錄調(diào)控機制,解決了以往存在的細胞異質(zhì)性難題,極大的擴大了ATAC-seq 技術的應用范圍。同時2018年10月,10x Genomics 推出的 Chromium 單細胞 ATAC 解決方案提供了一種全面的、可擴展的方法來研究分析單個樣本中成百上千個細胞中染色質(zhì)的開放情況??稍趩渭毎竭M行多組學聯(lián)合分析,深度挖掘細胞異質(zhì)性表觀遺傳調(diào)控機理。

技術原理

單細胞ATAC測序是通過改造Tn5轉座酶對混合的細胞核懸液進行核 DNA 的切割,然后使用微流控芯片將溶液中的細胞核包裹到油滴中,形成納米級的凝膠微珠乳濁液(GEMs)。采用 10x barcode條形碼,對每個細胞核切割的 DNA 加上唯一的10x barcode條形碼。通過文庫構建,測序,最終根據(jù) 10x barcode 條形碼將測序得到的序列關聯(lián)到每個單獨的細胞核上。

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單細胞ATAC測序技術原理

產(chǎn)品優(yōu)勢

低成本

每個細胞成本遠低于傳統(tǒng)單細胞ATAC測序

高分辨率

可在單細胞水平檢測轉錄調(diào)控區(qū)域的開放性染色質(zhì)

高通量

8通道微流體系統(tǒng),每個微流孔通道一次性可捕獲500-10000個細胞核

高效率

每個樣本細胞核捕獲率高達65%

大數(shù)據(jù)

獲得所有染色質(zhì)開放區(qū)域,不局限于某個轉錄因子位點

適用范圍廣

適用于細胞系,原代細胞,凍存細胞,新鮮組織等

經(jīng)驗豐富

累計制備100余種組織類型、5000+例的單細胞樣本,超高核抽提經(jīng)驗

應用方向

染色質(zhì)開放區(qū)域圖譜繪制

細胞異質(zhì)性預測新細胞類型

胚胎細胞發(fā)育表觀遺傳修飾

疾病潛在標志物預測

腫瘤表觀機制研究

基因調(diào)控

結果展示

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tSNE細胞分群
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轉錄因子聚類圖
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Motif動態(tài)分布分析
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細胞軌跡分析
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Peak可視化分析

常見問題

如何選擇單細胞ATAC-seq測序數(shù)據(jù)量?

建議每個細胞核測 25000 read pairs,一般數(shù)據(jù)量為25~50G可達到最佳測序數(shù)據(jù)量和測序飽和。

對于10X scATAC-seq的樣本要求?

(1)物種要求:人、小鼠、其他物種要求有較高質(zhì)量的基因組;

(2)樣本類型:細胞系,原代細胞,凍存細胞,新鮮組織等可制備高質(zhì)量單細胞懸液;

(3)樣本要求:單細胞懸液,采用活細胞,細胞活性>80%,細胞濃度700~1200 cells/μL,細胞總量可達1*10^6個,細胞成團率<5%;血液采用EDTA 抗凝的全血(不可肝素抗凝),>5ml;組織采用新鮮組織,200mg。

(4)細胞核抽提質(zhì)量要求:活細胞比例<5%(臺盼藍等染色可觀測);顯微鏡下,細胞核形態(tài)完整;盡量去除細胞碎片和細胞團。

單細胞ATAC-seq細胞分群和scRNA-seq有何不同?

單細胞ATAC測序根據(jù)染色質(zhì)的可及性特征進行降維聚類細胞分群,得到的細胞分群不依賴于基因表達,對于一些低豐度表達的細胞靈敏性更高,可通過染色質(zhì)開放區(qū)域挖掘更多低豐度表達的細胞。

單細胞轉錄測序和單細胞ATAC-seq可以聯(lián)合分析嗎?

可以。

目前關于scRNA-seq和scATAC-seq聯(lián)合分析有兩種情況:

(1)細胞量足夠的情況下,一份單細胞懸液可以分成兩份,一部分進行10X scRNA,另一部分抽核后進行10X scATAC。分別進行scRNA-seq和scATAC-seq,根據(jù)染色質(zhì)可及性和基因表達聯(lián)合分析挖掘更多具有表觀遺傳潛力的基因調(diào)控網(wǎng)絡。

(2)10x Genomics新的單細胞多組學解決方案:Chromium單細胞多組學ATAC+基因表達,實現(xiàn)了同一細胞同時分析基因表達和開放染色質(zhì),將得到ATAC文庫和基因表達文庫測序原始數(shù)據(jù)加載到Cell Ranger ARC分析流程中,并通過Loupe Browser進行可視化,將基因表達讀數(shù)與潛在的調(diào)控功能相關聯(lián)。這種方式得到的染色質(zhì)開放性和基因表達關系更緊密客觀真實,有助于尋找基因表達調(diào)控關系。

經(jīng)典案例

?scATAC-seq繪制哺乳動物染色質(zhì)可及性圖譜

文中對13個成年小鼠組織的約100000個單細胞進行ATAC測序分析,鑒定出85種不同的染色體可接近性模式及近400000個差異可接近性元件。利用測序數(shù)據(jù),將調(diào)控元件及其靶基因關聯(lián)起來,基于轉錄因子特異性定義亞群,探索細胞染色質(zhì)可接近性異質(zhì)性,并將小鼠染色質(zhì)可及性與人類全基因組關聯(lián),為哺乳動物細胞亞群基因調(diào)控相關的深入研究提供了依據(jù)。

文獻原文:A Single-Cell Atlas of In Vivo Mammalian Chromatin Accessibility. 2018, Cell, IF=38.637

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染色質(zhì)開放區(qū)域和轉錄因子Motif富集進行細胞的分群和鑒定

文章資訊

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